質(zhì)粒DNA的提取是從事基因工程工作中的一項(xiàng)基本實(shí)驗(yàn)技術(shù)，但提取方法有很多種，以下介紹一種最常用的方法：堿裂解法：此方法適用于小量質(zhì)粒DNA的提取，提取的質(zhì)粒DNA可直接用于酶切、PCR擴(kuò)增、銀染序列分析。
作為自然界中微生物的細(xì)菌和真菌是我們?nèi)庋劭床灰?jiàn)的，必須借助于一定的器械（顯微鏡），但是它們又是無(wú)處不在的。未了弄清楚它們的分布情況，特進(jìn)行探究
沙門(mén)氏菌的理化性質(zhì)：生化反應(yīng)很活潑，能分解多種糖類(lèi)和醇。
蛋白質(zhì)糖基化位點(diǎn)檢測(cè)：用酶或化學(xué)脫糖基化、通過(guò)選擇性標(biāo)記或通過(guò)凝集素親和層析法是檢測(cè)蛋白糖基化常用方法。
科研實(shí)驗(yàn)中，細(xì)胞的體外培養(yǎng)一直是一個(gè)重要環(huán)節(jié)。細(xì)胞要養(yǎng)好，就要用好血清，如MBC?有適合各種細(xì)胞培養(yǎng)的血清，尤其適合難養(yǎng)細(xì)胞，如：干細(xì)胞、肝細(xì)胞，神經(jīng)細(xì)胞，原代培養(yǎng)、細(xì)胞融合、轉(zhuǎn)染細(xì)胞等。
pH測(cè)量通常有比色法（pH試紙或比色皿）和電極法二種。比色法當(dāng)然不要標(biāo)定，而電極法就一定要標(biāo)定，因?yàn)殡姌O法pH測(cè)量就是將未知溶液與已知pHs值的標(biāo)準(zhǔn)溶液在測(cè)量電池中作用比較測(cè)定，這是電極法pH測(cè)量的“操作定義”所決定的。
PCR擴(kuò)增DNA的原理是：先將含有所需擴(kuò)增分析序列的靶DNA雙鏈經(jīng)熱變性處理解開(kāi)為兩個(gè)寡聚核苷酸單鏈，然后加入一對(duì)根據(jù)已知DNA序列由人工合成的與所擴(kuò)增的DNA兩端鄰近序列互補(bǔ)的寡聚核苷酸片段作為引物，即左右引物。此引物范圍就在包括所欲擴(kuò)增的DNA片段，一般需20-30個(gè)堿基對(duì)，過(guò)少則難保持與DNA單鏈的結(jié)合。引物與互補(bǔ)DNA結(jié)合后，以靶DNA單鏈為模板，經(jīng)反鏈雜交復(fù)性（退火），在Taq DNA聚合酶的作用下以4種三磷酸脫氧核苷（dNTP）為原料按5'到3'方向?qū)⒁镅由臁⒆詣?dòng)合成新的DNA鏈、使DNA重新復(fù)制成雙鏈。然后又開(kāi)始第二次循環(huán)擴(kuò)增。引物在反應(yīng)中不僅起引導(dǎo)作用，而且起著特異性的限制擴(kuò)增DNA片段范圍大小的作用。新合成的DNA鏈含有引物的互補(bǔ)序列，并又可作為下一輪聚合反應(yīng)的模板。如此重復(fù)上述DNA模板加熱變性雙鏈解開(kāi)—引物退火復(fù)性—在DNA聚合酶作用下的引物延伸的循環(huán)過(guò)程，使每次循環(huán)延伸的模板又增加1倍，亦即擴(kuò)增DNA產(chǎn)物增加1倍，經(jīng)反復(fù)循環(huán)，使靶DNA片段指數(shù)性擴(kuò)增。
標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)RM（reference material）是具有準(zhǔn)確量值的測(cè)量標(biāo)準(zhǔn)，是具有一種或多種足夠均勻并已確定特性值的，用于校準(zhǔn)設(shè)備、評(píng)價(jià)測(cè)量方法或給材料賦值的材料或物質(zhì)。應(yīng)用于化學(xué)測(cè)量、生物測(cè)量、工程測(cè)量、無(wú)力測(cè)量等領(lǐng)域。
纖維蛋白：是人類(lèi)發(fā)現(xiàn)最早的一種凝血因子，呈伸長(zhǎng)的橢球體，是由三對(duì)多肽鏈（一對(duì)α鏈、一對(duì)β鏈、一對(duì)γ鏈）以二硫鍵連接而成的二聚物，在肝臟中合成后進(jìn)入血漿，以溶解形式存在。
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